{"id":356485,"date":"2023-06-11T01:00:00","date_gmt":"2023-06-10T23:00:00","guid":{"rendered":"https:\/\/medizinonline.com\/?p=356485"},"modified":"2023-04-26T17:00:18","modified_gmt":"2023-04-26T15:00:18","slug":"diagnostico-molecular-y-metodos-convencionales-en-comparacion","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/medizinonline.com\/es\/diagnostico-molecular-y-metodos-convencionales-en-comparacion\/","title":{"rendered":"Diagn\u00f3stico molecular y m\u00e9todos convencionales en comparaci\u00f3n"},"content":{"rendered":"\n

Un equipo de investigaci\u00f3n internacional en el que participaron los hospitales universitarios de Lausana y Z\u00farich compar\u00f3 distintos m\u00e9todos de diagn\u00f3stico en un estudio retrospectivo a gran escala. En consonancia con los resultados emp\u00edricos anteriores, la conclusi\u00f3n del estudio es que los m\u00e9todos moleculares son superiores a los diagn\u00f3sticos f\u00fangicos convencionales cuando se sospecha una onicomicosis.<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Con una prevalencia estimada del 4-9% en la poblaci\u00f3n general, las onicomicosis son la causa m\u00e1s com\u00fan de aspecto anormal del aparato ungueal [1,2]. La identificaci\u00f3n r\u00e1pida y fiable del pat\u00f3geno es crucial para iniciar la terapia adecuada lo antes posible. En comparaci\u00f3n con los m\u00e9todos de diagn\u00f3stico convencionales, los m\u00e9todos moleculares son m\u00e1s r\u00e1pidos y tienen una mayor precisi\u00f3n en la identificaci\u00f3n de especies. Las herramientas de diagn\u00f3stico molecular disponibles en la actualidad difieren principalmente en los m\u00e9todos de extracci\u00f3n del ADN, los cebadores PCR utilizados y los productos del an\u00e1lisis PCR [3]. En comparaci\u00f3n con los m\u00e9todos de diagn\u00f3stico convencionales, los m\u00e9todos moleculares son m\u00e1s r\u00e1pidos (hallazgos en un d\u00eda) y tienen una mayor precisi\u00f3n, lo que resulta muy atractivo para su aplicaci\u00f3n en la pr\u00e1ctica cl\u00ednica [4]. <\/p>\n\n

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Microscop\u00eda de fluorescencia y cultivo de hongos frente a secuenciaci\u00f3n PCR <\/h3>\n\n

Se examinaron un total de 16 094 muestras de u\u00f1as mediante microscop\u00eda de fluorescencia directa [1]. Adem\u00e1s, se obtuvieron dos cultivos de hongos de cada muestra utilizando agar dextrosa Sabouraud con cloranfenicol (50 \u03bcg\/mL) y cloranfenicol m\u00e1s cicloheximida (400 \u03bcg\/mL). Por microscop\u00eda de fluorescencia directa, se detectaron elementos f\u00fangicos en el 68,1% de las muestras de u\u00f1as; por cultivo f\u00fangico, la tasa de detecci\u00f3n fue del 28,7%. Los dos m\u00e9todos mostraron una concordancia global del 58,4%. La mayor\u00eda de los resultados desviados proced\u00edan de muestras con resultados positivos en microscop\u00eda directa pero cultivo f\u00fangico negativo. En un total del 59,5% de las muestras en las que se detectaron elementos f\u00fangicos mediante microscop\u00eda de fluorescencia, el cultivo de hongos fue negativo. Entre los pacientes con un resultado positivo en el cultivo de hongos, los dermatofitos representaron la mayor proporci\u00f3n (47,9%), siendo el Trichophyton rubrum el pat\u00f3geno m\u00e1s com\u00fan, seguido de los “mohos no dermatofitos” (MND) (29,1%), las levaduras (21,8%) y las infecciones mixtas (1,2%). En 1148 casos, el diagn\u00f3stico f\u00fangico convencional mediante microscop\u00eda de fluorescencia y cultivo f\u00fangico result\u00f3 insuficiente, por lo que se recurri\u00f3 a una aclaraci\u00f3n adicional de diagn\u00f3stico molecular (Tab. 1)<\/strong> [1]. <\/p>\n\n

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\"\"<\/a><\/figure>\n\n

El cultivo de hongos s\u00f3lo detect\u00f3 hongos pat\u00f3genos en el 21,8% de los casos, por lo que mostr\u00f3 una baja sensibilidad, mientras que la secuenciaci\u00f3n por PCR demostr\u00f3 ser claramente superior con una tasa de detecci\u00f3n del 63,5%. La distribuci\u00f3n de frecuencias de los diferentes elementos f\u00fangicos identificados mediante secuenciaci\u00f3n PCR fue la siguiente: NDMs 67,6%, levaduras 26%, dermatofitos 4,8% e infecciones mixtas 1,6%. <\/p>\n\n

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El estudio de cohortes retrospectivo incluy\u00f3 muestras de u\u00f1as de pacientes que hab\u00edan sido remitidos al laboratorio especializado en dermatomicolog\u00eda del departamento de dermatolog\u00eda del Hospital Universitario de Lausana (CHUV) en 2013-2018 debido a una sospecha cl\u00ednica de onicomicosis. En todos los casos en los que los diagn\u00f3sticos micol\u00f3gicos convencionales no arrojaron resultados claros, se llev\u00f3 a cabo la secuenciaci\u00f3n por PCR. seg\u00fan [1]<\/em><\/td><\/tr><\/tbody><\/table><\/figure>\n\n

Literatura:<\/p>\n\n

    \n
  1. Pospischil I, et al.: Identification of Dermatophyte and Non-Dermatophyte Agents in Onychomycosis by PCR and DNA Sequencing-A Retrospective Comparison of Diagnostic Tools. Journal of Fungi 2022; 8(10): 1019. <\/li>\n\n\n\n
  2. Sigurgeirsson B, Baran R: La prevalencia de la onicomicosis en la poblaci\u00f3n mundial – Un estudio bibliogr\u00e1fico. JEADV 2014; 28: 1480-1491. <\/li>\n\n\n\n
  3. Verrier J, Monod M: Diagn\u00f3stico de las dermatofitosis mediante biolog\u00eda molecular. Mycopathologia 2017; 182: 193-202.<\/li>\n\n\n\n
  4. Petinataud D, et al: Diagn\u00f3stico molecular de la onicomicosis. J Mycol Med 2014; 24: 287-295.<\/li>\n<\/ol>\n\n

    <\/p>\n\n

    PR\u00c1CTICA DERMATOL\u00d3GICA 2023; 33(1): 39<\/em><\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"

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